logo
Karta przedmiotu
logo

Enzymologia

Podstawowe informacje o zajęciach

Cykl kształcenia: 2020/2021

Nazwa jednostki prowadzącej studia: Wydział Chemiczny

Nazwa kierunku studiów: Inżynieria farmaceutyczna

Obszar kształcenia: nauki techniczne/przyrodnicze

Profil studiów: ogólnoakademicki

Poziom studiów: pierwszego stopnia

Forma studiów: stacjonarne

Specjalności na kierunku:

Tytuł otrzymywany po ukończeniu studiów: inżynier

Nazwa jednostki prowadzącej zajęcia: Katedra Biotechnologii i Bioinformatyki

Kod zajęć: 12724

Status zajęć: wybierany dla programu

Układ zajęć w planie studiów: sem: 6 / W15 L15 / 2 ECTS / Z

Język wykładowy: polski

Imię i nazwisko koordynatora: dr inż. Konrad Hus

Cel kształcenia i wykaz literatury

Główny cel kształcenia: Poznanie mechanizmu działania, kinetyki enzymów oraz metod ich badania. Zapoznanie z aktualnymi poglądami na temat istoty katalizy enzymatycznej oraz elementami ich praktycznej weryfikacji. Zaznajomienie z historią i współczesnymi sposobami wykorzystania inhibicji enzymów w działaniu selektywnych leków.

Ogólne informacje o zajęciach: Moduł realizowany jest w szóstym semestrze studiów pierwszego stopnia. Realizowany jest w postaci 15 godzin wykładów oraz 15 godzin laboratoriów.

Inne: Aktualne publikacje naukowe związane tematycznie z realizowanym modułem.

Wykaz literatury, wymaganej do zaliczenia zajęć
Literatura wykorzystywana podczas zajęć wykładowych
1 Jeremy M. Berg, Lubert Stryer, John L. Tymoczko Biochemia WN. 2011
2 Hames B.D., Hooper N.M. Biochemia. Krótkie wykłady Wydawnictwo Naukowe PWN. 2009

Wymagania wstępne w kategorii wiedzy/umiejętności/kompetencji społecznych

Wymagania formalne: Rejestracja na dany semestr.

Wymagania wstępne w kategorii Wiedzy: Podstawowa wiedza z zakresu biochemii i biokatalizy.

Wymagania wstępne w kategorii Umiejętności: Umiejętność samokształcenia.

Wymagania wstępne w kategorii Kompetencji społecznych: Umiejętność zarówno pracy samodzielnej jak i grupowej.

Efekty kształcenia dla zajęć

MEK Student, który zaliczył zajęcia Formy zajęć/metody dydaktyczne prowadzące do osiągnięcia danego efektu kształcenia Metody weryfikacji każdego z wymienionych efektów kształcenia Związki z KEK Związki z PRK
01 Ma wiedzę z zakresu (i) budowy i działania enzymów oraz (ii) kinetyki reakcji enzymatycznych i ich inhibicji, a także zna metody ich badania wykład, laboratorium zaliczenie cz. pisemna K_W02++
P6S_WG
02 Zna aktualne poglądy na istoty temat katalizy enzymatycznej wykład, laboratorium zaliczenie cz. pisemna K_W07++
P6S_WG
03 Posiada umiejętność samokształcenia i podnoszenia swoich kwalifikacji zawodowych i aktualizowania wiedzy kierunkowej wykład, laboratorium zaliczenie cz. pisemna, kolokwium K_U05++
K_K03++
P6S_KR
P6S_UW
04 Potrafi zaplanować eksperyment laboratoryjny z zakresu badania właściwości enzymów oraz przeprowadzić niezbędne doświadczenia zarówno indywidualnie jak i w grupie laboratorium kolokwium, obserwacja wykonawstwa K_U14+++
K_K03++
P6S_KR
P6S_UO

Uwaga: W zależności od sytuacji epidemicznej, jeżeli nie będzie możliwości weryfikacji osiągniętych efektów uczenia się określonych w programie studiów w sposób stacjonarny w szczególności zaliczenia i egzaminy kończące określone zajęcia będą mogły się odbywać przy użyciu środków komunikacji elektronicznej (w sposób zdalny).

Treści kształcenia dla zajęć

Sem. TK Treści kształcenia Realizowane na MEK
6 TK01 Budowa i działanie enzymów. W01-03 MEK01 MEK03
6 TK02 Czynniki wpływające na aktywność enzymatyczną. W04-06 MEK01 MEK03
6 TK03 Metody badania aktywności enzymatycznej. W07-09 MEK01 MEK03
6 TK04 Kinetyka reakcji enzymatycznych. W10-12 MEK01 MEK03
6 TK05 Wykorzystanie enzymów w przemyśle farmaceutycznym. W13-15 MEK01 MEK02 MEK03
6 TK06 Metody pomiaru aktywności enzymatycznej. L01-10 MEK03 MEK04
6 TK07 Analiza aktywności enzymatycznej w produktach farmaceutycznych. L11-15 MEK03 MEK04

Nakład pracy studenta

Forma zajęć Praca przed zajęciami Udział w zajęciach Praca po zajęciach
Wykład (sem. 6) Przygotowanie do kolokwium: 4.00 godz./sem.
Godziny kontaktowe: 15.00 godz./sem.
Uzupełnienie/studiowanie notatek: 4.00 godz./sem.
Studiowanie zalecanej literatury: 1.00 godz./sem.
Laboratorium (sem. 6) Przygotowanie do laboratorium: 2.00 godz./sem.
Przygotowanie do kolokwium: 2.00 godz./sem.
Godziny kontaktowe: 15.00 godz./sem.
Dokończenia/wykonanie sprawozdania: 4.00 godz./sem.
Konsultacje (sem. 6)
Zaliczenie (sem. 6) Przygotowanie do zaliczenia: 1.00 godz./sem.
Zaliczenie pisemne: 2.00 godz./sem.

Sposób wystawiania ocen składowych zajęć i oceny końcowej

Forma zajęć Sposób wystawiania oceny podsumowującej
Wykład Ocena jest wystawiana na podstawie wyników z testu.
Laboratorium Ocena jest wystawiana na podstawie średniej z wyników ze wszystkich kolokwiów. Student musi zebrać min 50% z puli wszytkich możliwych punktów na kolokwium, napisać wszystkie kolokwia oraz dostarczyć w terminie sprawozdania z ćwiczeń.
Ocena końcowa Ocena końcowa z modułu jest średnią ocen z zajęć: K=(wA+wC+wL)/n (A-wykłady, C-ćwiczenia, L-laboratoria w-współczynnik uwzględniający termin zaliczenia: w=1,0 dla pierwszego terminu, w=0,9 dla drugiego terminu, w=0,8 dla trzeciego terminu). Średnia może być wyciągnięta tylko jeżeli wszystkie oceny są pozytywne. Wartości współczynników podane są do wiadomości studentów w trakcie zajęć organizacyjnych.

Przykładowe zadania

Wymagane podczas egzaminu/zaliczenia
(-)

Realizowane podczas zajęć ćwiczeniowych/laboratoryjnych/projektowych
(-)

Inne
(-)

Czy podczas egzaminu/zaliczenia student ma możliwość korzystania z materiałów pomocniczych : nie

Treści zajęć powiazane są z prowadzonymi badaniami naukowymi: tak

1 A. Bocian; J. Gikunju; K. Hus; J. Kimotho ; J. Legath; E. Manson; K. Mutinda; V. Petrilla Development of an Inhibition Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA) Prototype for Detecting Cytotoxic Three-Finger Toxins (3FTxs) in African Spitting Cobra Venoms 2022
2 A. Bocian; K. Hus; J. Kimani; J. Kimotho ; M. Kyama; J. Legath; E. Manson; V. Petrilla Development and Characterization of Anti-Naja ashei Three-Finger Toxins (3FTxs)-Specific Monoclonal Antibodies and Evaluation of Their In Vitro Inhibition Activity 2022
3 A. Barbasz; A. Bocian; A. Czyżowska; B. Dyba; K. Hus; J. Legath; V. Petrilla; M. Petrillova; E. Rudolphi-Szydło Effects of 3FTx Protein Fraction from Naja ashei Venom on the Model and Native Membranes: Recognition and Implications for the Mechanisms of Toxicity 2021
4 A. Bocian; J. Buczkowicz; E. Ciszkowicz; K. Hus; K. Lecka-Szlachta; J. Legath; L. Legath; V. Petrilla; M. Petrillova; M. Pietrowska Antimicrobial Activity of Protein Fraction from Naja ashei Venom Against Staphylococcus epidermidis 2020
5 A. Bocian; J. Buczkowicz; K. Hus; M. Jaromin; J. Legath; D. Łysiak; V. Petrilla; M. Petrillova; S. Sławek Comparison of Methods for Measuring Protein Concentration in Venom Samples 2020
6 A. Bocian; K. Hus Antibacterial properties of snake venom components 2020
7 A. Bocian; K. Hus; E. Kuna; J. Legath; A. Lewińska; V. Petrilla; M. Petrillova; M. Wnuk Evaluation of Antifungal Activity of Naja pallida and Naja mossambica Venoms against Three Candida Species 2020
8 A. Bocian; K. Hus; J. Legath; Ł. Marczak; V. Petrilla; M. Petrillova Different research approaches in unraveling the venom proteome of Naja ashei 2020
9 A. Bocian; J. Buczkowicz; K. Hus; M. Jaromin; J. Legath An effective method of isolating honey proteins 2019
10 A. Bocian; K. Hus Dlaczego jady węży wywołują krwotoki? Krótka historia metaloproteinaz z jadów węży 2019
11 A. Bocian; K. Hus Potencjał farmakologiczny składników jadu węży 2019
12 J. Adamczyk‐Grochala; A. Bocian; W. Hendzel; K. Hus; E. Kaleniuk; A. Lewinska; V. Petrilla; M. Petrillova; K. Szymura; M. Wnuk Snake venoms promote stress‐induced senescence in human fibroblasts 2019
13 T. Csank; M. Falis; M. Fedorova; K. Hus; J. Legath; S. Marcincak; D. Marcincakova; D. Mudronova; P. Schusterova Impact of Zinc Sulfate Exposition on Viability, Proliferation and Cell Cycle Distribution of Epithelial Kidney Cells 2019