logo
Karta przedmiotu
logo

Bioreaktory i metody separacji bioproduktów

Podstawowe informacje o zajęciach

Cykl kształcenia: 2024/2025

Nazwa jednostki prowadzącej studia: Wydział Wspólny dla biogospodarka

Nazwa kierunku studiów: Biogospodarka

Obszar kształcenia: nauki ścisłe/techniczne

Profil studiów: ogólnoakademicki

Poziom studiów: pierwszego stopnia

Forma studiów: stacjonarne

Specjalności na kierunku:

Tytuł otrzymywany po ukończeniu studiów: inżynier

Nazwa jednostki prowadzącej zajęcia: Katedra Inżynierii Chemicznej i Procesowej

Kod zajęć: 11668

Status zajęć: obowiązkowy dla programu

Układ zajęć w planie studiów: sem: 6 / W15 L15 / 3 ECTS / E

Język wykładowy: polski

Imię i nazwisko koordynatora: prof. dr hab. inż. Dorota Antos

Cel kształcenia i wykaz literatury

Główny cel kształcenia: Celem kształcenia jest zaznajomienie studentów ze stechiometrią i kinetyką reakcji biochemicznych, projektowania bioreaktorów i metod oczyszczania produktów

Ogólne informacje o zajęciach: Student uzyskuje wiedzę z zakresu stechiometrii i kinetyki reakcji biochemicznych oraz modelowania pracy reaktorów biochemicznych z uwzględnieniem zagadnień związanych z procesami wymiany masy w reaktorach.

Wykaz literatury, wymaganej do zaliczenia zajęć
Literatura wykorzystywana podczas zajęć wykładowych
1 B. Tabiś, R. Grzywacz Procesy i reaktory biochemiczne Politechnika Krakowska. 1993
2 K.W. Szewczyk Technologia biochemiczna OW Politechniki Warszawskiej. 1995
3 S. Aiba, A.E. Humphrey, N.F. Millis Inżynieria biochemiczna. WNT. 1997
4 K.W. Szewczyk Bilansowanie i kinetyka procesów biochemicznych OW Politechniki Warszawskiej. 2000
Literatura wykorzystywana podczas zajęć ćwiczeniowych/laboratoryjnych/innych
1 Bałdyga J., M. Henczka, W. Podgórska Obliczenia w inżynierii bioreaktorów OW Politechniki Warszawskiej. 1996
Literatura do samodzielnego studiowania
1 M. Shuler, F Kargi Bioprocess Engineering Prentice-Hall. 2001

Wymagania wstępne w kategorii wiedzy/umiejętności/kompetencji społecznych

Wymagania formalne: Wymagane zaliczenie przedmiotów: inżynierii bioprocesowa

Wymagania wstępne w kategorii Wiedzy: Podstawowa wiedza z zakresu inżynierii bioprocesowej

Wymagania wstępne w kategorii Umiejętności: Potrafi zapisać bilans materiałowy dla prostych procesów

Wymagania wstępne w kategorii Kompetencji społecznych: Umiejętność pracy w grupie

Efekty kształcenia dla zajęć

MEK Student, który zaliczył zajęcia Formy zajęć/metody dydaktyczne prowadzące do osiągnięcia danego efektu kształcenia Metody weryfikacji każdego z wymienionych efektów kształcenia Związki z KEK Związki z PRK
01 student posiada wiedzę z zakresu stechiometrii i kinetyki reakcji biochemicznych oraz projektowania bioreaktorów, umie zaprojektować bioreaktor, zna podstawowe metody oczyszczania bioproduktów wykład, laboratorium problemowe zaliczenie cz. pisemna, obserwacja wykonawstwa K_W01+
K_W02+
K_W08+
K_U06+
K_U07+
P6S_UW
P6S_WG

Uwaga: W zależności od sytuacji epidemicznej, jeżeli nie będzie możliwości weryfikacji osiągniętych efektów uczenia się określonych w programie studiów w sposób stacjonarny w szczególności zaliczenia i egzaminy kończące określone zajęcia będą mogły się odbywać przy użyciu środków komunikacji elektronicznej (w sposób zdalny).

Treści kształcenia dla zajęć

Sem. TK Treści kształcenia Realizowane na MEK
6 TK01 Stechiometria reakcji biochemicznych. Kinetyka reakcji biochemicznych. Modele kinetyki populacji drobnoustrojów: kinetyka zużycia substratu, produktu, kinetyka wzrostu komórek, kinetyka reakcji enzymatycznych, kinetyki uwzględniające niejednorodność wiekową i fizjologiczną populacji. Modelowanie pracy reaktorów biochemicznych. Reaktor okresowy, reaktor zbiornikowy pojedynczy, pojedynczy z recyklem, kaskada reaktorów zbiornikowych, reaktor rurowy z przepływem tłokowym oraz z przemieszaniem wzdłużnym, reaktory barbotażowe, fluidyzacyjne i membranowe. Zagadnienia związane z modelowaniem procesów wymiany masy w reaktorach i przenoszeniem skali procesu. Metody oczyszczania bioproduktów: chromatografia, ekstrakcja, strącanie wykład 30 h , labolatorium komputerowe 15h MEK01

Nakład pracy studenta

Forma zajęć Praca przed zajęciami Udział w zajęciach Praca po zajęciach
Wykład (sem. 6) Przygotowanie do kolokwium: 10.00 godz./sem.
Godziny kontaktowe: 15.00 godz./sem.
Uzupełnienie/studiowanie notatek: 5.00 godz./sem.
Studiowanie zalecanej literatury: 10.00 godz./sem.
Laboratorium (sem. 6) Przygotowanie do laboratorium: 5.00 godz./sem.
Przygotowanie do kolokwium: 7.00 godz./sem.
Godziny kontaktowe: 15.00 godz./sem.
Dokończenia/wykonanie sprawozdania: 5.00 godz./sem.
Konsultacje (sem. 6)
Egzamin (sem. 6) Przygotowanie do egzaminu: 15.00 godz./sem.
Egzamin pisemny: 1.00 godz./sem.

Sposób wystawiania ocen składowych zajęć i oceny końcowej

Forma zajęć Sposób wystawiania oceny podsumowującej
Wykład Wykład: zaliczenie przedmiotu na podstawie oceny z kolokwium - OW
Laboratorium Laboratorium komputerowe: zaliczenie na podstawie wykonanego zadania obliczeniowego - OL
Ocena końcowa Ocena końcowa przedmiotu obliczana jest według następującego wzoru: OK = 65%OW+ 35%OL

Przykładowe zadania

Wymagane podczas egzaminu/zaliczenia
(-)

Realizowane podczas zajęć ćwiczeniowych/laboratoryjnych/projektowych
(-)

Inne
(-)

Czy podczas egzaminu/zaliczenia student ma możliwość korzystania z materiałów pomocniczych : nie

Treści zajęć powiazane są z prowadzonymi badaniami naukowymi: tak

1 D. Antos; M. Korbetskyy; P. Mruc; M. Olbrycht Altering the mobile phase composition to enhance self-disproportionation of enantiomers in achiral chromatography 2024
2 D. Antos; W. Piątkowski Equilibria and kinetics of ion-exchange 2024
3 D. Antos; M. Balawejder; J. Gumieniak; P. Mruc; M. Olbrycht; W. Piątkowski Separation of non-racemic mixtures of enantiomers by achiral chromatography 2023
4 D. Antos; M. Kołodziej; W. Piątkowski; T. Rumanek Preferential precipitation of acidic variants from monoclonal antibody pools 2023
5 D. Antos; M. Kołodziej; W. Piątkowski; T. Rumanek; P. Zimoch Coupling of chromatography and precipitation for adjusting acidic variant content in a monoclonal antibody pool 2023
6 D. Antos; R. Bochenek; B. Filip; W. Marek Flow behavior of protein solutions in a lab-scale chromatographic system 2023
7 D. Antos; R. Dürr; A. Kienle; E. Otto; M. Przywara Modeling of particle formation in pan granulators with sieve-mill recycle 2023
8 D. Antos; R. Muca Protein association on multimodal chromatography media 2023
9 D. Antos; W. Piątkowski Kinetic and Thermodynamic Aspects of Hydrophobic Interaction Chromatography 2023
10 D. Antos; I. Poplewska; P. Zimoch Dissociation events during processing of monoclonal antibodies on strong cation exchange resins 2022
11 D. Antos; A. Bajek-Bil; M. Balawejder; M. Olbrycht; W. Piątkowski Sposób otrzymywania stereoizomeru szczawianu nafronylu o konfiguracji absolutnej (2S, 2\'R) 2021
12 D. Antos; A. Bajek-Bil; M. Balawejder; M. Olbrycht; W. Piątkowski; I. Poplewska Development of a Route to the Most Active Nafronyl Stereoisomer by Coupling Asymmetric Synthesis and Chiral Chromatography Separation 2021
13 D. Antos; K. Baran; R. Bochenek; B. Filip; D. Strzałka Influence of the geometry of extra column volumes on band broadening in a chromatographic system. Predictions by computational fluid dynamics 2021
14 D. Antos; K. Baran; W. Piątkowski; A. Stańczak; P. Zimoch Separation of charge variants of a monoclonal antibody by overloaded ion exchange chromatography 2021
15 D. Antos; P. Antos; M. Balawejder; R. Bochenek; J. Gorzelany; K. Kania; M. Kołodziej; N. Matłok; M. Olbrycht; W. Piątkowski; M. Przywara; G. Witek Sposób wytwarzania nawozu wieloskładnikowego o kontrolowanym uwalnianiu składników 2021
16 D. Antos; R. Dürr; A. Kienle; E. Otto; M. Przywara Population Balance Modelling of Pan Granulation Processes 2021
17 D. Antos; R. Dürr; A. Kienle; E. Otto; M. Przywara Process Behavior and Product Quality in Fertilizer Manufacturing Using Continuous Hopper Transfer Pan Granulation—Experimental Investigations 2021
18 D. Antos; W. Piątkowski; I. Poplewska A case study of the mechanism of unfolding and aggregation of a monoclonal antibody in ion exchange chromatography 2021
19 D. Antos; A. Górak; M. Jaworska Review on the application of chitin and chitosan in chromatography 2020
20 D. Antos; G. Carta; M. Kołodziej; R. Muca; W. Piątkowski Effects of negative and positive cooperative adsorption of proteins on hydrophobic interaction chromatography media 2020
21 D. Antos; J. Beck; A. Durauer; R. Hahn; A. Jungbauer; M. Kołodziej; W. Marek; W. Piątkowski; D. Sauer Scale up of a chromatographic capture step for a clarified bacterial homogenate - Influence of mass transport limitation and competitive adsorption of impurities 2020
22 D. Antos; K. Baran; A. Stańczak A high-throughput method for fast detecting unfolding of monoclonal antibodies on cation exchange resins 2020
23 D. Antos; P. Antos; M. Balawejder; R. Bochenek; M. Kołodziej; N. Matłok; M. Olbrycht; W. Piątkowski; M. Przywara Mechanism of nutrition activity of a microgranule fertilizer fortified with proteins 2020
24 D. Antos; K. Baran; W. Marek; W. Piątkowski Effect of flow behavior in extra-column volumes on the retention pattern of proteins in a small column 2019
25 D. Antos; M. Balawejder; H. Lorenz; M. Olbrycht; W. Piątkowski; I. Poplewska; A. Seidel-Morgenstern Cooperative Kinetic Model to Describe Crystallization in Solid Solution Forming Systems 2019
26 D. Antos; M. Kołodziej; A. Łyskowski; W. Piątkowski; I. Poplewska; P. Szałański Determination of protein crystallization kinetics by a through-flow small-angle X-ray scattering method 2019
27 D. Antos; P. Antos; M. Balawejder; R. Bochenek; J. Gorzelany; K. Kania; M. Kołodziej; N. Matłok; M. Olbrycht; W. Piątkowski; M. Przywara; G. Witek Sposób wytwarzania nawozu wieloskładnikowego o kontrolowanym uwalnianiu składników 2019